Введение
Специалисты тратят много времени и усилий на разработку лучших протоколов разведения собак для получения здорового помета, но информации о состоянии непосредственного окружения плодного яйца в настоящее время очень мало. Плодные оболочки окружают тело развивающегося щенка на протяжении всей беременности и, наряду с плацентой, играют ключевую роль в росте и развитии плода (1), поскольку они необходимы для метаболического, газового и гормонального обмена между организмом матери и плода (2). У собак выделяют следующие плодные оболочки: аллантоис, амнион, хорион и желточный мешок (3), образцы околоплодной жидкости у этого вида животных отбирают из амниона и аллантоиса (Рисунок 1).
Что такое плодная жидкость?
Амниотическая полость обеспечивает физическую защиту развивающегося плода в жидкой среде (4) — амниотической жидкости. Это сложная биологическая жидкость, обеспечивающая механическую и антимикробную защиту плода, а также смазку, питание и поступление факторов роста, имеющих важное значение для нормального развития плода (5). Амниотическая жидкость образуется из секрета ротовой полости, носоглотки, трахеи и легких, а также из выделяемой концептусом мочи (6).
Аллантоическая жидкость у плотоядных видов скапливается внутри аллантоической мембраны, окружающей амнион (7). Аллантоический мешок растет, почти полностью перекрывая хориальный мешок, и сохраняется до родов. Он сообщается с мочевым аппаратом плода и служит резервуаром для продуктов метаболизма плода (4). Первоначальное накопление аллантоической жидкости, вероятно, в основном происходит по механизмам трансмембранного транспорта и секреторной активности из внезародышевых оболочек, а на более поздних сроках беременности — из мезонефроса, метанефроса и почечных секретов (8).
В результате плодную жидкость у собаки можно собрать как из амниотической, так и из аллантоической полостей (Рисунок 2). По изменениям объема и состава этих жидкостей можно оценить метаболический, патологический или онтогенетический статус плода на конкретной стадии беременности (8). Сбор плодной жидкости у суки возможен начиная с середины беременности, поскольку жидкости уже достаточно, а при ультразвуковом исследовании можно различить амниотическую и аллантоическую мембраны (9). Центез проводят иглой через трансабдоминальный доступ и под непрерывным ультразвуковым контролем (10).
Зачем центрифугировать плодную жидкость?
Жидкость получают в основном с целью дородовой оценки жизнеспособности и выявления заболеваний плода (11–13). В клинической медицине человека анализ амниотической биологической жидкости широко используется для диагностики хромосомных аномалий или моногенных нарушений, а также для оценки зрелости легких плода, выявления микробной инвазии в амнион, интраамниотического воспаления, инфекций плода и для определения пола плода (14–16).
В ветеринарной медицине раннее выявление аномалий важно для обеспечения благополучия животных и выгодно для заводчика в финансовом плане, поскольку способствует рождению здоровых щенков (и сохранению здоровья суки) и позволяет прервать беременность при неблагоприятном прогнозе. До сих пор плодную жидкость от сук с малым сроком беременности анализировали лишь в нескольких исследованиях (17, 18); в одном исследовании показали возможность определять пол приплода по амниотическим клеткам при одноплодной беременности у собак (19).
Кроме того, пункцию амниотической или аллантоической полостей у собак использовали для исследовательских целей (20, 21), генной терапии и индукции аборта (22). Рассматривают также ее применение в концепции «Единое здравоохранение» (One Health) — учитывая, что собаки и их владельцы живут в одной среде и подвергаются воздействию одних и тех же условий, собаки могут стать хорошей моделью для изучения определенных эффектов окружающей среды, таких как воздействие токсинов (Рисунок 3).
В дальнейшем сбор плодной жидкости будет необходим для создания базы данных для описания амниотической и аллантоической жидкости у здоровых беременных сук; это позволит определить биомаркеры для прогнозирования перинатального исхода.
.png)
Когда следует проводить центез?
Автор разработал эффективную и доступную методику центрифугирования плодной жидкости у беременных сук во второй половине беременности. Процедуру проводят аналогично применяемой у человека, под контролем ультразвукового исследования (9). До 35-го дня после зачатия объем плодной жидкости в организме суки небольшой, и можно предположить, что потенциальный риск травмирования концептуса выше. Сбор плодной жидкости путем пункции иглой с 35-го дня и до конца беременности считают безопасным (17, 19).
Методология
Суке, у которой планируют получать образец плодной жидкости, проводят полное общее и гинекологическое обследование, включая как минимум анализ мочи, анализ крови (развернутый клинический и биохимический) и УЗИ брюшной полости, чтобы оценить исходное состояние здоровья и течение беременности.
Перед получением образца брюшную стенку фиксируют зажимом и дезинфицируют хирургическим скрабом с повидон-йодом и 70%-ным раствором этанола. За 30–60 минут до вмешательства на кожу наносят местный анестетик (лидокаин/прилокаин) в дозировке не более 0,4 мл/кг на область введения иглы. Затем на обработанную кожу до начала сбора материала накладывают липкий пластырь (23).
Существует два варианта получения образцов, в обоих используют одноразовую спинальную иглу (калибра 18–21G x 3½ дюйма / 9 см).
Методика пункции вслепую
Этот метод проводят без наведения иглы. Сначала беременную матку и гестационный мешок, а также плод исследуют ультразвуковым методом и выбирают оптимальное место для получения жидкости без травмирования плода или плодных оболочек. Одновременно оценивают расположение плода (в левом или правом роге матки) и место сбора жидкости (аллантоис или амнион). Затем под углом почти 90 ° через брюшную стенку вводят спинальную иглу и продвигают ее сначала в полость матки, а затем в гестационный мешок (амнион или аллантоис).
На скане часто видны амниотическая и аллантоисовая оболочки, но не всегда удается точно определить положение кончика иглы (Рисунок 4).
После введения иглы жидкость аспирируют шприцем объемом 3 или 5 мл, немедленно переносят в стерильную пробирку и замораживают при температуре -20 °C или -80 °C для последующего анализа.
Методика пункции с наведением иглы
Метод предполагает использование направляющей иглы, которую можно прикрепить к конвексному ультразвуковому датчику. Перед получением образца направляющую стерилизуют в автоклаве и (при получении у одной суки нескольких образцов) между получением образцов из каждого гестационного мешка дезинфицируют 70%-ным этанолом. Направляющую прикрепляют к зонду согласно инструкциям производителя, а спинальную иглу вводят через небольшое отверстие в заранее установленном месте на направляющей (Рисунок 5). Введение в плодные оболочки, получение жидкости и ее обработку осуществляют по процедуре, описанной для методики пункции вслепую.
Использовать направляющую может быть безопаснее и проще менее опытным операторам, а основным недостатком этого подхода является необходимость стерилизовать аппарат между получением образцов плодной жидкости из разных концептусов у одной суки во время процедуры. По мере накопления опыта операторы начинают предпочитать методику пункции вслепую. Из каждого плода удается извлекать, в зависимости от размеров суки, дня беременности и положения плода, в пределах 0,5–5,0 мл жидкости.
Перед извлечением спинномозговой пункционной иглы извлеченный объем жидкости следует заменить равным объемом стерильного 0,9%-ного раствора хлорида натрия. После получения образца суку следует выдержать в спокойной обстановке не менее 24 часов, чтобы предотвратить возможные кратковременные осложнения.
В чем заключаются риски?
У человека потенциальными осложнениями амниоцентеза считают инфекцию амниотического мешка, индукцию преждевременных родов, нарушение дыхания у матери, деформацию плода, аллоиммунизацию, незаживление пункционной раны (24).
Хотя в медицине человека повреждение плода происходит очень редко, оно может развиться вторично в результате травмирования иглой. На сегодняшний день автор не обнаружил ни одного случая макроскопического повреждения плода после проведения центеза у сук, хотя микроскопические повреждения возможны — не исключено, что некоторые микроскопические участки проколов матки, плодных оболочек или самого плода остались незамеченными, а если они и имели место, то не имели клинического значения (9).
Заключение
Хотя методы сбора плодной жидкости у суки все еще находятся в зачаточном состоянии, этот метод может уже в ближайшие годы обеспечить ветеринарным врачам, заводчикам и владельцам мелких животных ряд преимуществ. Для опытного врача сбор аллантоической или амниотической жидкости не составит больших трудностей, а риск для плода при этом минимальный. Анализ жидкости способствует раннему выявлению аномалий и генных нарушений, дефектов плаценты, микробной инфекции суки или плода, а также в определении пола.
-
1.Gude NM, Roberts CT, Kalionis B, et al. Growth and function of the normal human placenta. Thromb. Res. 2004;114:397-407.
-
2.Minazaki CK, Gagioti S, Zago D, et al. Acid phosphatase and cathepsin D are active expressed enzymes in the placenta of the cat. Res. Vet. Sci. 2008;84:326-334.
-
3.Carter AM. IFPA Senior Award Lecture: Mammalian fetal membranes. Placenta 2016;48 Suppl 1:S21-S30.
-
4.Chavatte-Palmer P, Tarrade A. Placentation in different mammalian species. Ann. Endocrinol. (Paris) 2016;77:67-74.
-
5.Underwood MA, Gilbert WM, Sherman MP. Amniotic fluid: not just fetal urine anymore. J. Perinatol. 2005;25:341-348.
-
6.Brace RA. Physiology of amniotic fluid volume regulation. Clin. Obstet. Gynecol. 1997;40:280-289.
-
7.Leiser R, Kaufmann P. Placental structure: in a comparative aspect. Exp. Clin. Endocrinol. 1994;102:122-134.
-
8.Li N, Wells DN, Peterson AJ, et al. Perturbations in the biochemical composition of fetal fluids are apparent in surviving bovine somatic cell nuclear transfer pregnancies in the first half of gestation. Biol. Reprod. 2005;73:139-148.
-
9.Tal S, Kahila Bar-Gal G, Arlt SP. Evaluation of short-term safety of ultrasound-guided foetal fluid sampling in the dog (Canis lupus familiaris) Vet. Rec. 2021;188(7):e31.
-
10.Nizard J. Amniocentesis: technique and education. Curr. Opin. Obstet. Gynecol. 2010; 22:152-154.
-
11.Shulman LP and Elias S. Amniocentesis and chorionic villus sampling. West. J. Med. 1993;159:260-268.
-
12.Tseng JJ, Chou MM, Lo FC, et al. Detection of chromosome aberrations in the second trimester using genetic amniocentesis: experience during 1995-2004. Taiwan J. Obstet. Gynecol. 2006;45:39-41.
-
13.Connolly KA, Eddleman KA. Amniocentesis: A contemporary review. World J. Obstet. Gynecol. 2016;5:58-65.
-
14.Cruz-Lemini M, Parra-Saavedra M, Borobio V, et al. How to perform an amniocentesis. Ultrasound Obstet. Gynecol. 2014;44:727-731.
-
15.Musilova I, Bestvina T, Stranik J, et al. Transabdominal amniocentesis is a feasible and safe procedure in preterm prelabor rupture of membranes. Fetal Diagn. Ther. 2017;42:257-261.
-
16.Wood PL, Ball BA, Scoggin K, et al. Lipidomics of equine amniotic fluid: Identification of amphiphilic (O-acyl)-omega-hydroxy-fatty acids. Theriogenology 2018;105:120-125.
-
17.Bonte T, Del Carro A, Paquette J, et al. Foetal pulmonary maturity in dogs: Estimated from bubble tests in amniotic fluid obtained via amniocentesis. Reprod. Domest. Anim. 2017;52:1025-1029.
-
18.Veronesi MC, Bolis B, Faustini M, et al. Biochemical composition of fetal fluids in at term, normal developed, healthy, viable dogs and preliminary data from pathologic littermates. Theriogenology 2018;108:277-283.
-
19.Layssol D PAC-MS. Fetal sex determination by amniocentesis in the canine species: a case report. In; Proceedings, 21st EVSSAR Congress 2018, Venice, Italy;173.
-
20.Lutzko C, Omori F, Abrams-Ogg AC, et al. Gene therapy for canine alpha-L-iduronidase deficiency: in utero adoptive transfer of genetically corrected hematopoietic progenitors results in engraftment but not amelioration of disease. Hum. Gene. Ther. 1999;10:1521-1532.
-
21.Hayashita-Kinoh H, Yugeta N, Okada H, et al. Intra-amniotic rAAV-mediated microdystrophin gene transfer improves canine X-linked muscular dystrophy and may induce immune tolerance. Mol. Ther. 2015;23:627-637.
-
22.Manca R, Rizzo A, Trisolini C, et al. Intra-vesicle administration of D-cloprostenol for induction of abortion in mid-gestation bitches. Anim. Reprod. Sci. 2008;106:133-142.
-
23.van Oostrom H, Knowles TG. The clinical efficacy of EMLA cream for intravenous catheter placement in client-owned dogs. Vet. Anaesth. Analg. 2018;45(5):604-608.
-
24.Hayat M, Hill M, Kelly D, et al. A very unusual complication of amniocentesis. Clin. Case Rep. 2015;3:345-348.